甲亢

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TUhjnbcbe - 2023/9/11 21:36:00
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前言

老龄化相关疾病的患病率高、预后较差。而探寻合适的衰老模型,预防衰老相关性疾病具有重要意义。文章通过研究小鼠甲状腺*症与衰老的关系,采用LC-MS、GC-MS非靶代谢组学及DIA蛋白质组学结合的方法,分析内源性代谢组和血清蛋白质组的变化。为甲状腺*症小鼠衰老模型的建立及探索抗衰老药物研发提供新思路。

年06月,鲁南制药集团股份有限公司冯芹和张贵民研究员课题组在FrontiersinImmunology期刊发表了题为“TheAgingFeaturesofThyrotoxicosisMice:Malnutrition,ImmunosenescenceandLipotoxicity”的研究成果,通过LC-MS、GC-MS非靶代谢组学和DIA蛋白质组学研究方法,描绘了血清蛋白质组和内源性代谢图谱,发现了小鼠甲状腺*症与衰老特征,探究了甲状腺*症与衰老疾病的机理,为探究衰老机制及抗衰老药物的研发提供了理论依据。

中文标题:甲状腺*症小鼠的衰老特征:营养不良,免疫衰老与脂*性

研究对象:小鼠

发表期刊:FrontiersinImmunology

影响因子:8.

发表时间:年6月

合作单位:鲁南制药集团股份有限公司

运用生物技术:LC-MS非靶代谢组学、GC-MS非靶代谢组学、DIA蛋白质组学(由欧易/鹿明生物提供技术支持)

研究思路

研究方法

1.实验分组

(1)对照组:雌性KM小鼠

(2)模型组:雌性KM小鼠+口服甲状腺素片混悬液

2.技术路线

2.1血常规检查:EDTAK2抗凝剂、自动血液分析仪、流式细胞术检测CD4+、CD8+T淋巴细胞亚群的阳性率、PerCP-Cy5.5小鼠外周血CD3、FITC标记大鼠抗小鼠CD4抗体、APC-H7大鼠抗小鼠CD8a、PE大鼠抗小鼠IFN-γ

2.2CD4+IFN-γ+T淋巴细胞检测:IFN-γ+T淋巴细胞、CytoFLEX流式细胞仪

2.3血清生化分析:BS-全自动生化分析仪

2.4血清蛋白质组测定:DIA-MS

2.5血清LC-MS非靶代谢组学:ACQUITYUHPLC联合ABSCIEXTripleTOF

2.6血清GC-MS非靶代谢组学:AgilentBGC联合AgilentAMSD

2.7粪便LC-MS非靶代谢组学:DionexUltimateRSUHPL

3.统计分析:

ANOVA、alog-ranktest、DIA、OPLS-DA、S-t检验、Pearsoncorrelation、R软件、Metascape、STRING、progenesisQ、CytExpert、SpectronautPulsa

研究结果

1、不同血细胞计数和生化指标的变化

血常规检测结果显示白细胞(WBC)、中性粒细胞(NEUT)、淋巴细胞总数(淋巴)、红细胞(RBC)、血红蛋白(HGB),红细胞压积(HCT)和血小板(PLT)均下降,表明过量甲状腺素会引起全血细胞减少(表1)。

小鼠连续摄入过量甲状腺素20天后,转氨酶(ALT)和天冬氨酸转氨酶(AST)显著升高,表明小鼠有肝损伤。总蛋白(TP)、白蛋白(ALB)和球蛋白(Glb)水平显著降低,表明过量的甲状腺素导致低蛋白血症或低白蛋白血症。总胆固醇(TC)、低密度脂蛋白胆固醇(LDC-C)和高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)水平显著降低,而甘油三酯(TG)水平显著降低显著升高,表明甲状腺*症小鼠有低胆固醇血症、低脂血症和高脂血症。

表1

甲状腺*症小鼠不同血细胞计数和生化指标的变化

2、淋巴细胞亚群和功能的变化

与正常对照组比,甲状腺*症小鼠的CD3+CD4+百分比显著下降,而CD3+CD8的百分比显著增加,所以CD4+/CD8+的百分比下降明显。CD3+CD4+IFN-γ+的百分比也显著降低(图2)。

图2

淋巴细胞亚群和功能的变化

3、甲状腺*症小鼠与正常小鼠血清蛋白质组比较分析

PCA分析表明,甲状腺*症小鼠与正常小鼠两组之间有差异(图3A)。DIA蛋白质组学分析了甲状腺*症小鼠中种差异表达的蛋白(DEPs),其中6种上调,种下调(图3B)。Metascape在线分析法对种下调蛋白进行了分析(图3C)。

图3

比较蛋白质组学分析

STRING分析了补体、凝血级联、Alb和Ttr(图4A)。血液凝固通路和抗凝纤溶因子均被下调,而在这些下调蛋白中,32种与免疫系统相关,表明体液免疫应答下降。大量免疫球蛋白下调,表明适应性免疫系统也随之下降(图4B)。对Alb、Trf以及补体和凝血级联进行相关分析,结果表明Alb与补体和凝血级联中的DEPs呈正相关(图4C-D)。

图4

补体和凝血级联中下调的DEPs

通过STRING在线分析,发现许多DEPs与体内平衡有关,负责脂质运输、离子运输和维生素运输。它们的下调表明脂质、离子和化学物质的体内平衡被破坏,影响甲状腺*症小鼠系统的多细胞有机体发育(图5A)。此外,下调的DEPs与多细胞生物的发育直接相关(图5B)。

图5

下调的DEPs与体内平衡和多细胞有机体发育有关

4、血清LC-MS代谢组学分析结果及其与蛋白质组学的相关性

甲亢组和正常组之间的OPLS-DA评分存在显著差异。基于LC-MS代谢组学鉴定并量化了血清中种代谢物,其中种为差异表达代谢物(DEMs)。

KEGG途径分析表明,DEMs富含类固醇激素生物合成、初级胆汁酸生物合成、胆汁分泌、缬氨酸、亮氨酸和异亮氨酸生物合成、花生四烯酸代谢、鞘脂信号通路等途径。在Alb和C1qb显著相关的条件下,LC-MSDEMs中筛选出20个DEMs,其中下调的DEMs与下调的DEPs呈正相关(图6)。

图6

血清LC-MS代谢组学分析及其与蛋白质组学的相关性

5、血脂代谢组学分析结果及其与蛋白质组学的相关性

基于Lipidmaps数据库,LC-MS代谢组学鉴定并量化了血清中种脂质代谢物,其中种为差异表达代谢物(DEMs),包括种上调和种下调。血脂DEMs与DEPs进行相关性分析,在与Alb和C1qb显著相关的条件下,筛选出13个脂质DEMs(图7)。

图7

血脂代谢组学分析及其与蛋白质组学的相关性

6、血清GC-MS代谢组学分析结果及其与蛋白质组学的相关性

甲亢组和正常组之间的OPLS-DA评分存在显著差异。GC-MS代谢组学鉴定并定量检测了种血清中的代谢物,其中80种为差异表达代谢物(DEMs,13种上调,67种下调)。

KEGG途径分析表明,DEMs在蛋白质消化和吸收、氨酰tRNA生物合成、氨基酸生物合成、矿物质吸收、ABC转运体等途径中富集。Alb和C1qb同时显著相关的条件下,筛选出10了个脂质DEMs。其中,下调的DEMs与下调的DEPs呈正相关,上调的DEMs与下调的DEPs呈负相关。

图8

血清GC-MS代谢组学分析

7、粪便LC-MS代谢组学分析结果

甲状腺*症组和正常组之间的OPLS-DA评分有显著差异。基于LC-MS代谢组学鉴定并定量了种代谢物,其中种为差异表达代谢物(DEMs)。

KEGG途径分析表明,DEMs富含花生四烯酸代谢、甾体激素生物合成、亚油酸代谢、神经活性配体受体相互作用等途径。DEMs的分类表明,氨基酸、肽及类似物大多数被上调。在甲状腺*症小鼠的粪便中,雄甾烷甾体、胆甾烷甾体、胆汁酸、醇及其衍生物、孕烷甾体、二十碳烯酸、脂肪酸酯、羟基甾体、亚麻酸及其衍生物显著下调。

大多数DEMs是二肽,它们可能无法通过KEGG分析,因此并未在图中显示。二肽应在蛋白质消化和吸收途径中的上调,表明氨基酸和二肽会随着粪便的排泄而丢失,这也是低蛋白血症的原因(图9)。

图9

粪便LC-MS代谢组学分析

8、血清质谱结果的一致性和准确性

LC-MS和GC-MS同时检测血清中的DEMs,其结果是一致的。LC-MS检测到TGs上调,GC-MS检测到胆固醇下调,LC-MS/MS检测到Alb下调与生化试验结果一致(表2)。DEPs中的Apoa1、Apoa2和Apoa4代表HDL,它们的下调与生化试验中HDL-C的结果一致。总共有25种免疫球蛋白或片段在DEPs、Jchain、Igkc和Ighg中被发现下调选择其为代表,生化试验结果与Glb一致。所有的比较都证明了MS检测结果的准确性。

表2

不同检测方法下DEM和DEP的一致性

相关讨论

研究发现血常规显示过量的甲状腺素导致了白细胞总数减少。流式细胞术检测出的甲状腺*小鼠CD4/CD8比值和CD4+IFN-γ+T细胞数量减少,表明发生了免疫衰老。DIA蛋白质组学分析显示了免疫功能下降。脂*性代谢产物的上调是免疫衰老的原因。

研究结论

文章通过LC-MS和GC-MS非靶代谢组学联合DIA蛋白质组学方法,检测甲状腺*症小鼠的血清蛋白和脂质代谢物等,并从营养、代谢、免疫、内分泌角度分析甲状腺*症与衰老疾病的关系。研究发现脂质代谢紊乱、营养不良、免疫衰老和脂*性,是引发衰老相关疾病的机制。通过本研究不仅可用于衰老相关疾病的预防,也可用于新药的研发。

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文章通过LC-MS、GC-MS非靶向代谢组学技术与DIA蛋白质组学技术,以甲状腺*症模型为基础探究衰老疾病的机制,并为抗衰老药物的研发提供新思路。

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